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GB?5009.5-2016 食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)?食品中蛋白質(zhì)的測(cè)定(凱氏)


前言

本標(biāo)準(zhǔn)代替GB5009.5—2010《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)食品中蛋白質(zhì)的測(cè)定》、GB/T14889.2—2008《糧油檢驗(yàn)植物油料粗蛋白質(zhì)的測(cè)定》、GB/T15673—2009《食用菌中粗蛋白質(zhì)含量的測(cè)定》、GB/T5511—2008《谷物和豆類(lèi)氮含量測(cè)定和粗蛋白質(zhì)含量計(jì)算凱氏法》、GB/T9695.11—2008《肉與肉制品氮含量測(cè)定》和GB/T9832—2008《糧油檢驗(yàn)植物油料餅粕含氮量的測(cè)定》。本標(biāo)準(zhǔn)與GB5009.5—2010相比,

主要變化如下:——增加附錄A蛋白質(zhì)折算系數(shù)。


1范圍

本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了食品中蛋白質(zhì)的測(cè)定方法。

本標(biāo)準(zhǔn)第一法和第二法適用于各種食品中蛋白質(zhì)的測(cè)定,第三法適用于蛋白質(zhì)含量在10g/100g以上的糧食、豆類(lèi)奶粉、米粉、蛋白質(zhì)粉等固體試樣的測(cè)定。

本標(biāo)準(zhǔn)不適用于添加無(wú)機(jī)含氮物質(zhì)、有機(jī)非蛋白質(zhì)含氮物質(zhì)的食品的測(cè)定。

第一法凱氏定氮法

2原理食品中的蛋白質(zhì)在催化加熱條件下被分解,產(chǎn)生的氨與硫酸結(jié)合生成硫酸銨。堿化蒸餾使氨游離,用硼酸吸收后以硫酸或鹽酸標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液滴定,根據(jù)酸的消耗量計(jì)算氮含量,再乘以換算系數(shù),即為蛋白質(zhì)的含量。


3試劑和材料

3.1試劑

除非另有說(shuō)明,本方法所用試劑均為分析純,水為GB/T6682規(guī)定的三級(jí)水。

3.1.1硫酸銅(CuSO?·5H?O)。

3.1.2硫酸鉀(K?SO?)。

3.1.3硫酸(H?SO?)。

3.1.4硼酸(H?BO?)。

3.1.5甲基紅指示劑(C??H??N?O?)。

3.1.6溴甲酚綠指示劑(C??H??Br?O?S)。

3.1.7亞甲基藍(lán)指示劑(C??H??ClN?S·3H?O)。

3.1.8氫氧化鈉(NaOH)。

3.1.9 95%乙醇(C?H?OH)。

3.2試劑配制

3.2.1硼酸溶液(20g/L):稱(chēng)取20g硼酸,加水溶解后并稀釋至1000mL。

3.2.2氫氧化鈉溶液(400g/L):稱(chēng)取40g氫氧化鈉加水溶解后,放冷,并稀釋至100mL。

3.2.3硫酸標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液[c(1/2H?SO?)]0.0500mol/L或鹽酸標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液[c(HCl)]0.0500mol/L。

3.2.4甲基紅乙醇溶液(1g/L):稱(chēng)取0.1g甲基紅,溶于95%乙醇,用95%乙醇稀釋至100mL。

3.2.5亞甲基藍(lán)乙醇溶液(1g/L):稱(chēng)取0.1g亞甲基藍(lán),溶于95%乙醇,用95%乙醇稀釋至100mL。

3.2.6 溴甲酚綠乙醇溶液(1 g/L):稱(chēng)取0.1 g溴甲酚綠,溶于95 %乙醇,用95 %乙醇稀釋至100 mL。

3.2.7 A混合指示液:2份甲基紅乙醇溶液與1份亞甲基藍(lán)乙醇溶液臨用時(shí)混合。

3.2.8 B混合指示液:1份甲基紅乙醇溶液與5份溴甲酚綠乙醇溶液臨用時(shí)混合。


4 儀器和設(shè)備


4.1 天平:感量為1 mg。

4.2 定氮蒸餾裝置:如圖1所示。

4.3 自動(dòng)凱氏定氮儀。

說(shuō)明:

1——電爐;

2——水蒸氣發(fā)生器(2 L燒瓶);

3——螺旋夾;

4——小玻杯及棒狀玻塞;

5——反應(yīng)室;

6——反應(yīng)室外層;

7——橡皮管及螺旋夾;

8——冷凝管;

9——蒸餾液接收瓶。

圖1 定氮蒸餾裝置圖

5 分析步驟

5.1 凱氏定氮法

5 分析步驟

5.1 凱氏定氮法

5.1.1 試樣處理:稱(chēng)取充分混勻的固體試樣0.2 g~2 g、半固體試樣2 g~5 g或液體試樣10 g~25 g(約相當(dāng)于30 mg~40 mg氮),精確至0.001 g,移入干燥的100 mL、250 mL或500 mL定氮瓶中,加入0.4 g硫酸銅、6 g硫酸鉀及20 mL硫酸,輕搖后于瓶口放一小漏斗,將瓶以45°角斜支于有小孔的石棉網(wǎng)上。小心加熱,待內(nèi)容物全部碳化,泡沫完全停止后,加強(qiáng)火力,并保持瓶?jī)?nèi)液體微沸,至液體呈藍(lán)綠色并澄清透明后,再繼續(xù)加熱0.5 h~1 h。取下放冷,小心加入20 mL水。放冷后,移入100 mL容量瓶中,并用少量水洗滌定氮瓶,洗液并入容量瓶中,再加水至刻度,混勻備用。同時(shí)做試劑空白試驗(yàn)。

5.1.2 測(cè)定:按圖1裝好定氮蒸餾裝置,向水蒸氣發(fā)生器內(nèi)裝水至2/3處,加入數(shù)粒玻璃珠,加甲基紅乙醇溶液數(shù)滴及數(shù)毫升硫酸,以保持水呈酸性,加熱煮沸水蒸氣發(fā)生器內(nèi)的水并保持沸騰。

5.1.3 向接收瓶?jī)?nèi)加入10.0 mL硼酸溶液及1滴~2滴混合指示液(B)并保持滿(mǎn)瓶,并使冷凝管的 下端插入液面下,根據(jù)試樣中氮含量,準(zhǔn)確吸取2.0 mL~10.0 mL試樣處理液由小玻杯注入反應(yīng)室,以10 mL水洗滌小玻杯并使之流入反應(yīng)室內(nèi),隨后塞緊棒狀玻塞。將10.0 mL氫氧化鈉溶液倒入小玻杯,提起玻塞使其緩緩流入反應(yīng)室,立即將玻塞蓋緊,并加水封。夾緊螺旋夾,開(kāi)始蒸餾。蒸餾10 min 后移動(dòng)蒸餾液接收瓶,液面離開(kāi)冷凝管下端,再蒸餾1 min。然后用少量水沖洗冷凝管下端外部,取下蒸餾液接收瓶。以硫酸或鹽酸標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液滴定至終點(diǎn),如用A混合指示液,終點(diǎn)顏色為灰藍(lán)色;如用B混合指示液,終點(diǎn)顏色為淺紅色。同時(shí)做試劑空白。

5.2 自動(dòng)凱氏定氮儀法

稱(chēng)取充分混勻的固體試樣0.2 g~2 g、半固體試樣2 g~5 g或液體試樣10 g~25 g(約相當(dāng)于30 mg~40 mg氮),精確至0.001 g,至消化管中,再加入0.4 g硫酸銅、6 g硫酸鉀及20 mL硫酸于消化爐進(jìn)行消化。當(dāng)消化爐溫度達(dá)到420℃后,繼續(xù)消化1 h,此時(shí)消化管中的液體呈綠色透明狀,取出冷卻后加入50 mL水,于自動(dòng)凱氏定氮儀(使用前加入氫氧化鈉溶液,鹽酸或硫酸標(biāo)準(zhǔn)溶液以及含有混合指示劑A或B的硼酸溶液)上實(shí)現(xiàn)自動(dòng)加液、蒸餾、滴定和記錄滴定數(shù)據(jù)的過(guò)程。


6 分析結(jié)果的表述

試樣中蛋白質(zhì)的含量按式(1)計(jì)算:

式中:

X——試樣中蛋白質(zhì)的含量,單位為克每百克(g/100g);

V?——試液消耗硫酸或鹽酸標(biāo)準(zhǔn)滴定液的體積,單位為毫升(mL);

V?——試劑空白消耗硫酸或鹽酸標(biāo)準(zhǔn)滴定液的體積,單位為毫升(mL);

c——硫酸或鹽酸標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液濃度,單位為摩爾每升(mol/L);

0.0140——1.0 mL硫酸[c(\(\frac{1}{2}\)H?SO?) = 1.000 mol/L]或鹽酸[c(HCl) = 1.000 mol/L]標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液相當(dāng)?shù)牡馁|(zhì)量,單位為克(g);

m——試樣的質(zhì)量,單位為克(g);

V?——吸取消化液的體積,單位為毫升(mL);

F——氮換算為蛋白質(zhì)的系數(shù),各種食品中氮轉(zhuǎn)換系數(shù)見(jiàn)附錄A;

100——換算系數(shù)。

蛋白質(zhì)含量≥1 g/100 g時(shí),結(jié)果保留三位有效數(shù)字;蛋白質(zhì)含量<1 g/100 g時(shí),結(jié)果保留兩位有效數(shù)字。

注:當(dāng)只檢測(cè)氮含量時(shí),不需要乘蛋白質(zhì)換算系數(shù)F。


7 精密度

在重復(fù)條件下獲得的兩次獨(dú)立測(cè)定結(jié)果的絕對(duì)差值不得超過(guò)算術(shù)平均值的10%。

第二法 分光光度法


8 原理

食品中的蛋白質(zhì)在催化加熱條件下被分解,分解產(chǎn)生的氨與硫酸結(jié)合生成硫酸銨,在pH 4.8的乙酸鈉 - 乙酸緩沖溶液中與乙酰丙酮和甲醛反應(yīng)生成黃色的 3,5 - 二乙酰 - 2,6 - 二甲基 - 1,4 - 二氫化吡啶化合物。在波長(zhǎng) 400 nm 下測(cè)定吸光度值,與標(biāo)準(zhǔn)系列比較定量,結(jié)果乘以換算系數(shù),即為蛋白質(zhì)含量。


9 試劑和材料

9.1 試劑

除非另有說(shuō)明,本方法所用試劑均為分析純,水為 GB/T 6682 規(guī)定的三級(jí)水。

9.1.1 硫酸銅(CuSO?·5H?O)。

9.1.2 硫酸鉀(K?SO?)。

9.1.3 硫酸(H?SO?):優(yōu)級(jí)純。

9.1.4 氫氧化鈉(NaOH)。

9.1.5 對(duì)硝基苯酚(C?H?NO?)。

9.1.6 乙酸鈉(CH?COONa·3H?O)。

9.1.7 無(wú)水乙酸鈉(CH?COONa)。

9.1.8 乙酸(CH?COOH):優(yōu)級(jí)純。

9.1.9 37%甲醛(HCHO)。

9.1.10 乙酰丙酮(C?H?O?)。9.2 試劑配制

9.2.1 氫氧化鈉溶液(300 g/L):稱(chēng)取30 g氫氧化鈉加水溶解后,放冷,并稀釋至100 mL。

9.2.2 對(duì)硝基苯酚指示劑溶液(1 g/L):稱(chēng)取0.1 g對(duì)硝基苯酚指示劑溶于20 mL 95 %乙醇中,加水稀釋至100 mL。

9.2.3 乙酸溶液(1 mol/L):量取5.8 mL乙酸,加水稀釋至100 mL。

9.2.4 乙酸鈉溶液(1 mol/L):稱(chēng)取41 g無(wú)水乙酸鈉或68 g乙酸鈉,加水溶解稀釋至500 mL。

9.2.5 乙酸鈉 - 乙酸緩沖溶液:量取60 mL乙酸鈉溶液與40 mL乙酸溶液混合,該溶液pH 4.8。

9.2.6 顯色劑:15 mL甲醛與7.8 mL乙酰丙酮混合,加水稀釋至100 mL,劇烈振搖混勻(室溫下放置穩(wěn)定3d)。

9.2.7 氨氮標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液(以氮計(jì))(1.0 g/L):稱(chēng)取105℃干燥2 h的硫酸銨0.472 0 g加水溶解后移于100 mL容量瓶中,并稀釋至刻度,混勻,此溶液每毫升相當(dāng)于1.0 mg氮。

9.2.8 氨氮標(biāo)準(zhǔn)使用溶液(0.1 g/L):用移液管吸取10.00 mL氨氮標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液于100 mL容量瓶?jī)?nèi),加水定容至刻度,混勻,此溶液每毫升相當(dāng)于0.1 mg氮。


10 儀器和設(shè)備

10.1 分光光度計(jì)。

10.2 電熱恒溫水浴鍋:100℃±0.5℃。

10.3 10 mL具塞玻璃比色管。

10.4 天平:感量為1 mg。


11 分析步驟

11.1 試樣消解

稱(chēng)取充分混勻的固體試樣0.1 g~0.5 g(精確至0.001 g)、半固體試樣0.2 g~1 g(精確至0.001 g)

或液體試樣1 g~5 g(精確至0.001 g),移入干燥的100 mL或250 mL定氮瓶中,加入0.1 g硫酸銅、1 g硫酸鉀及5 mL硫酸,搖勻后于瓶口放一小漏斗,將定氮瓶以45°角斜支于有小孔的石棉網(wǎng)上。緩慢加熱,待內(nèi)容物全部炭化,泡沫完全停止后,加強(qiáng)火力,并保持瓶?jī)?nèi)液體微沸,至液體呈藍(lán)綠色澄清透明后,再繼續(xù)加熱0.5 h。取下放冷,慢慢加入20 mL水,放冷后移入50 mL或100 mL容量瓶中,并用少量水洗滌定氮瓶,洗液并入容量瓶中,再加水至刻度,混勻備用。按同一方法做試劑空白試驗(yàn)。

11.2 試樣溶液的制備

吸取2.00 mL~5.00 mL試樣或試劑空白消化液于50 mL或100 mL容量瓶?jī)?nèi),加1滴~2滴對(duì)硝基苯酚指示劑溶液,搖勻后滴加氫氧化鈉溶液中和至黃色,再滴加乙酸溶液至溶液無(wú)色,用水稀釋至刻度,混勻。

11.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

吸取0.00 mL、0.05 mL、0.10 mL、0.20 mL、0.40 mL、0.60 mL、0.80 mL和1.00 mL氨氮標(biāo)準(zhǔn)使用溶液(相當(dāng)于0.00 μg、5.00 μg、10.0 μg、20.0 μg、40.0 μg、60.0 μg、80.0 μg和100.0 μg氮),分別置于10 mL比色管中。加4.00 mL乙酸鈉 - 乙酸緩沖溶液及4.00 mL顯色劑,加水稀釋至刻度,混勻。置于100℃水浴中加熱15 min。取出用水冷卻至室溫后,移入1 cm比色杯內(nèi),以零管為參比,于波長(zhǎng)400 nm處測(cè)量吸光度值,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)各點(diǎn)吸光度值繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線或計(jì)算線性回歸方程。

11.4 試樣測(cè)定

吸取0.50 mL~2.00 mL(約相當(dāng)于氮<100 μg)試樣溶液和同量的試劑空白溶液,分別于10 mL比色管中。加4.0 mL乙酸鈉 - 乙酸緩沖液及4.0 mL顯色劑,加水稀釋至刻度,混勻。置于100℃水浴中加熱15 min。取出用水冷卻至室溫后,移入1 cm比色杯內(nèi),以零管為參比,于波長(zhǎng)400 nm處測(cè)量吸光度值,試樣吸光度值與標(biāo)準(zhǔn)曲線比較定量或代入線性回歸方程求出含量。

12 分析結(jié)果的表述

試樣中蛋白質(zhì)的含量按式(2)計(jì)算:

式中:

X——試樣中蛋白質(zhì)的含量,單位為克每百克(g/100g);

C——試樣測(cè)定液中氮的含量,單位為微克(μg);

C?——試劑空白測(cè)定液中氮的含量,單位為微克(μg);

V?——試樣消化液定容體積,單位為毫升(mL);

V?——試樣溶液總體積,單位為毫升(mL);

m——試樣質(zhì)量,單位為克(g);

V?——制備試樣溶液的消化液體積,單位為毫升(mL);

V?——測(cè)定用試樣溶液體積,單位為毫升(mL);

1000——換算系數(shù);

100——換算系數(shù);

F——氮換算為蛋白質(zhì)的系數(shù)。

蛋白質(zhì)含量≥1g/100g時(shí),結(jié)果保留三位有效數(shù)字;蛋白質(zhì)含量<1g/100g時(shí),結(jié)果保留兩位有效數(shù)字。

13 精密度

在重復(fù)性條件下獲得的兩次獨(dú)立測(cè)定結(jié)果的絕對(duì)差值不得超過(guò)算術(shù)平均值的10%。


第三法 燃燒法

14 原理

試樣在900℃~1 200℃高溫下燃燒,燃燒過(guò)程中產(chǎn)生混合氣體,其中的碳、硫等干擾氣體和鹽類(lèi)被吸收管吸收,氮氧化物被全部還原成氮?dú)?,形成的氮?dú)饬魍ㄟ^(guò)熱導(dǎo)檢測(cè)器(TCD)進(jìn)行檢測(cè)。


15 儀器和設(shè)備

15.1 氮/蛋白質(zhì)分析儀。

15.2 天平:感量為0.1 mg。


16 分析步驟

按照儀器說(shuō)明書(shū)要求稱(chēng)取0.1 g~1.0 g充分混勻的試樣(精確至0.000 1 g),用錫箔包裹后置于樣品盤(pán)上。試樣進(jìn)入燃燒反應(yīng)爐(900℃~1200℃)后,在高純氧(≥99.99%)中充分燃燒。燃燒爐中的產(chǎn)物(NO?)被載氣二氧化碳或氦氣運(yùn)送至還原爐(800℃)中,經(jīng)還原生成氮?dú)夂髾z測(cè)其含量。


17 分析結(jié)果的表述

試樣中蛋白質(zhì)的含量按式(3)計(jì)算:

式中:

X——試樣中蛋白質(zhì)的含量,單位為克每百克(g/100g);

C——試樣中氮的含量,單位為克每百克(g/100g);

F——氮換算為蛋白質(zhì)的系數(shù)。

結(jié)果保留三位有效數(shù)字。


18 精密度

在重復(fù)性條件下獲得的兩次獨(dú)立測(cè)定結(jié)果的絕對(duì)差值不得超過(guò)算術(shù)平均值的10%。


19 其他

本方法第一法當(dāng)稱(chēng)樣量為5.0 g時(shí),檢出限為8 mg/100 g。

本方法第二法當(dāng)稱(chēng)樣量為5.0 g時(shí),檢出限為0.1 mg/100 g。

附 錄 A

常見(jiàn)食物中的氮折算成蛋白質(zhì)的折算系數(shù)

常見(jiàn)食物中的氮折算成蛋白質(zhì)的折算系數(shù)見(jiàn)表 A.1。

表A.1 蛋白質(zhì)折算系數(shù)表

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